磷酸化多肽價格及磷酸化多肽操作步驟
操作步驟：
1.剪一適當大小的硝酸纖維素膜并劃成25px大小的方格;
2.用(磷酸化多肽價格)緩沖液A浸濕膜并放于一用同樣緩沖液浸濕的濾紙上，使膜平坦;
3.用緩沖液B(含1mg/ml牛血清白蛋白)將樣品稀釋到合適的濃度，膜上每個點所加的樣品其激酶活性在0.5～50pmol單位(1pmol單位代表每分鐘轉移1pmol 32P的酶量)，當酶比活性在1μmol/min·mg-1時則每個點應加純酶0.5～50ng;
4.用微量加樣器加1～5μl樣品于膜上方格中央，待液滴消失后將膜面對含有緩沖液A(包括1～10mg/ml的底物)的Parafilm封口膜(貼于玻璃平板上)，在濕潤環境中23℃作用30分鐘。大片膜可密封于塑料袋中;
5.在100ml緩沖液A中洗膜并置于一新的Parafilm膜上(加有反應混合物溶液25μl/cm2)，23℃作用5～30分鐘;
6.用(磷酸化多肽價格)緩沖液A 100ml洗膜4次，空氣干燥后進行放射自顯影。或切成方塊進行液閃計數定量。
該方法在應用時*常見的問題是硝酸纖維素膜過載(指總蛋白或酶活力單位)。硝酸纖維素膜結合BSA的線性范圍可達50μg/cm2(相當于每斑點5μg)，而結合容量可達500μg/cm2，如果樣品本身造成蛋白質超載，則應降低稀釋液中的BSA濃度。同時應注意不要加過量的酶，因為超過50pM單位即超過了該方法的線性范圍，并可能影響硝酸纖維素膜鄰近斑點的檢測。該方法用于其它蛋白激酶檢測時應適當變換測定條件。因蛋白激酶活性的斑點印跡方法與標準的液相方法在靈敏度、檢測范圍、線性等方面相當，所以可以代替后者進行常規檢測。也在天然凝膠電泳和轉移電泳后分析蛋白激酶活性的分布，可用于分析酶在不同發育階段各組織表達的變化、cDNA克隆分析和突變體分析。
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